Д.Ю.Рязанцев, Э.М.Чудинова, Л.Ю.Кокаева, С.Н.Эланский, П.Н.Балабко, Г.Л.Белова, С.К.Завриев
Фитопатогендик козу карын Colletotrichum coccodes картошка менен помидордо антракноз жана тубар кара так деп аталган коркунучтуу ооруларды пайда кылат. Морфологиялык мүнөздөмөлөрү боюнча, аларды көп учурда башка микроорганизмдер пайда кылган оорулардан айырмалоо кыйын; жашыл помидор жемиштеринде, оору симптомсуз болушу мүмкүн, ал бышкан кызыл мөмөлөрдө гана байкалат. Патогендин ылдам жана так диагнозу үчүн реалдуу убакыт режиминдеги ПТР тест системасы сунушталат. Тест тутумун иштеп чыгуу үчүн Россиянын ар кайсы аймактарында картошка түйнүгүнөн бөлүнүп чыккан 45 C. коккод штаммдарынын глицеринтрифосфатдегидрогеназа генинин нуклеотиддик ырааттуулугу аныкталды.
Алынган натыйжалардын жана GenBank маалымат базасында бар башка түрлөрдүн ушул сыяктуу ырааттуулугун талдоонун негизинде, C. coccodes үчүн түрлөргө мүнөздүү праймерлер жана зонд иштелип чыккан. Түзүлгөн тест тутумунун өзгөчөлүгүн текшерүү үчүн ПОМР помидор жана картошка өсүмдүктөрү (Fusarium oxysporum, F. verticillium, Phomopsis phaseoli, Alternaria alternata, Helminthosporium solani, Colletotrichum coccodes) менен байланышкан мите жана сапротрофикалык козу карындардын 15 түрүнүн таза культураларынан бөлүнүп алынган ДНК менен жүргүзүлдү. Phellinus ferrugineovelutinus, Stemphylium vesicarium, Helminthosporium solani, Phomopsis phaseoli, Neonectria radicicola, Rhizoctonia solani, Penicillium sp., Cladosporium fulvum, C. cladosporioides). Colletotrichum коккод ДНКсынын бар экендиги 20-27 босого циклинде аныкталды, ал эми башка түрлөрү 40 циклден кийин аныкталды же табылган жок. Сыноо тутуму, анализденген ПТР аралашмасында Д-нын ДНКнын 0.01 нг / мм3 ашкан концентрациясын коккоддоону ишенимдүү аныктоого мүмкүндүк берет. Иштелип чыккан тест тутумун колдонуп, козу карын ооруларынын белгилери бар помидор жалбырактарындагы жана картошканын тубундогу оорунун тышкы белгилери жок C. коккоддору бар экендиги изилденди. Грибоктук инфекциянын белгилери бар жалбырактар Краснодар аймагындагы эки башка талаадан, тубу - Кострома, Москва, Калуга, Нижний Новгород аймактарындагы талаалардан жыйналды. Краснодар аймагынан C. coccodes ДНКсы камтылган бир помидор жалбырагы табылды; Кострома, Москва, Калуга региондорунда өстүрүлгөн 5 түп түйнүктүн бул патогенинин ДНКсынын олуттуу экендиги аныкталды.
тааныштыруу
Colletotrichum тукумундагы козу карындар дан өсүмдүктөрүнө, жашылчаларга, чөптөргө, көп жылдык мөмө-жемиш өсүмдүктөрүнө таасир этүүчү кооптуу фитопатогендер. Бул уруунун бардык жерде кездешүүчү түрлөрүнүн бири, Colletotrichum coccodes (Wallr).
Хьюз, картошка менен помидордун антракноздун жана кара тактын козгогучу жана Solanaceae тукумунун бир катар башка өсүмдүктөрүнүн ооруларын козгойт. отоо чөптөр (Dillard, 1992). C. коккоддор өсүмдүктүн бардык жер астындагы бөлүктөрүнө, сабактын түбүнө, жалбырактарына жана мөмөлөрүнө таасир этет (Андривон жана башкалар, 1998; Джонсон, 1994). Картошканын жуккан түйнөгүнүн кабыгында четтери билинбеген боз тактардын өөрчүшү байкалат, аларда спора жана микросклеротиянын кара чекиттери даана байкалат. Сактоодо тубарлардын целлюлозасында жумшартылган курамдагы жаралар пайда болушу мүмкүн, б.а. оору антракноз фазасына өтөт, бирок бул өтө сейрек кездешет.
Ошол эле учурда, антракноздун белгилери (майда кара чекиттери бар тери жаралары) помидор жемиштерине мүнөздүү. Жалбырактарда C. коккоддордун белгилери, адатта, сары ткандар менен чектешкен кара күрөң тактар пайда болот (Джонсон, 1994).
Түйнөктөрдө кара тактын пайда болушу алардын сырткы көрүнүшүн бузат, бул айрыкча жууп-тазаланган кызыл кабыгы бар картошканы сатууда байкалат. Пилланы сыйруу ашыкча бууланууга жана сактагычтагы жоготуулардын көбөйүшүнө алып келет (Hunger, McIntyre, 1979). Өсүмдүктөрдүн башка органдарынын жабыркашы түшүмдүүлүктүн төмөндөшүнө алып келет, ал ачык жана жабык жерде да байкалган (Джонсон, 1994; Црор жана башкалар, 1999). C. коккоддорунан улам пайда болгон оорулар дүйнөнүн дээрлик бардык картошка өндүрүүчү аймактарында, анын ичинде Россияда кеңири тараган (Leesa, Hilton, 2003; Belov et al, 2018). Бул кокустарга каршы фунгициддердин натыйжалуулугунун жетишсиздигинен жана туруктуу сортторунун жоктугунан бул ооруларды контролдоо кыйынга турат (Оку, Жашыр, 1995).
C. коккоддордун эмдөөсү уруктун түйнүгүндө сакталып калышы мүмкүн (Оку, Жашыруу, 1988; Джонсон жана башкалар, 1997), помидордун уруктары (Бен-Даниел жана башкалар, 2010), топуракта, өсүмдүктөрдүн калдыктарында узак убакыт бою жашай алышат (Dillard, 1990) ; Диллард, Кобб, 1993) жана отоо чөптөрдө (Raid, Pennypacker, 1987). Бир катар авторлордун эмгектери (Оку, Жашыр, 1988; Баркдолл, Дэвис, 1992; Джонсон жана башкалар, 1997; Диллард, Кобб, 1993) картошка менен помидордогу оорунун өрчүшү көбүнчө үрөндө инокуляттын болушунан көз каранды экендигин көрсөттү. топурак. Ошондуктан, илдеттен жоготууларды минималдаштыруу үчүн, үрөндүк материалда, топуракта, картошканын үрөндөрүндө жана сактоо үчүн коюлган помидордун үрөнүндө козу карындын таралышын (анын ичинде сандык) диагностикалоо керек. Морфологиялык диагностиканы топуракта жана өсүмдүктөрдүн материалында микросклеротиянын болушу менен гана жүргүзсө болот, бирок алар козу карындардын башка түрлөрүндө да кездешет.
Түйнөктөрдөгү белгилер Helminthosporium solani козу карынынан пайда болгон күмүш котуруна абдан окшош. Colletotrichum коккоддорун жана Helminthosporium соландарын таза культурага бөлүп алуу бир топ татаал жана пайдалуу чөйрөдө жай өсүшүнө байланыштуу көп убакытты талап кылат. Colletotrichum коккоддорун тез аныктоо үчүн инструменталдык диагностикалык ыкмаларды колдонуу керек. Эң ыңгайлуу ыкма болуп полимераздык чынжыр реакциясы (ПТР) жана анын модификациясы - реалдуу убакыт режиминдеги ПТР саналат. Учурда британиялык изилдөөчүлөр тарабынан иштелип чыккан тест системасы (Cullen et al., 2002) рДНКнын ITS1 аймагы үчүн Европа жана АКШда колдонулат. Аны колдонуу Россиянын изоляттарын анализдөөдө жакшы натыйжаларды көрсөттү (Белов жана башкалар, 2018). Бирок, C. коккоддору өтө өзгөрүлмө жана аны бир ДНК тизмегинен аныктоо жалган терс натыйжаларга алып келиши мүмкүн. Ишенимдүү диагноз коюу үчүн, бир нече түргө мүнөздүү ДНК тизмектери үчүн анализ талап кылынат, ошого байланыштуу Г коксоддорун глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназа генинин ырааттуулугу боюнча аныктоого мүмкүндүк берген оригиналдуу тест тутумун иштеп чыктык.
Материалдар жана ыкмалар
Түзүлгөн тест тутумдарынын эффективдүүлүгүн жана өзгөчөлүгүн баалоо үчүн, биз авторлор тарабынан помидор жалбырактары менен мөмөлөрүнүн, картошка түйнүктөрүнүн оорулуу үлгүлөрүнөн бөлүнүп чыккан козу карындардын 15 түрүнүн таза культураларын колдондук (1-таблица). Изоляция үчүн грибоктук инфекциянын белгилери бар өсүмдүктөрдүн органдары алынган, бир түпкө бирден көп эмес орган.
Кабыгы бар түйнөктүн кесиндиси, помидордун мөмөсүнүн кесими жана жабыркаган жалбырак дүрбү микроскоптун астына коюлду, андан кийин мицелий, спора же ткандардын кесиндиси курч кесилген ийне менен Петри идишиндеги агар чөйрөсүнө (wort agar) өткөрүлүп берилди. Изоляттар 4 ° С температурада пробиркалардагы агар кыйгачтарында сакталган.
Козу карын ооруларынын белгилери бар анализге арналган помидор жалбырактарынын үлгүлөрү чогултулгандан кийин дароо (талаага) 70% этил спиртине салынып, анда ДНК бөлүнүп чыкканга чейин сакталган. Картошканын түйнектерү лабораторияга жеткирилип, арасынан (2 × 1 см кесим) тазаланып, –20 ° C температурада тоңдурулган. ДНК бөлүнүп чыкканга чейин тоңдурулган сакталат.
ДНКны бөлүп алуу үчүн козу карындардын таза культуралары суюк буурчак чөйрөсүндө өстүрүлдү. Грибоктун мицелийи суюк чөйрөдөн алынып, фильтр кагазында кургатылып, суюк азотто тоңдурулуп, гомогендештирилип, CTAB буферинде инкубацияланып, хлороформ менен тазаланып, изопропанол жана 0.5 М калий ацетаты менен аралаштырылып, 2% спирт менен эки жолу жуулду. Алынган ДНК ионсыздандырылган сууда эрип, –70 ° С температурада сакталган (Кутузова жана башкалар, 20). ДНК концентрациясы Qubit 2017деги (Циаген, Германия) кош тилкелүү ДНК үчүн HS ДНКнын сандык топтомунун жардамы менен өлчөнгөн. Алкоголизделген жана тоңдурулган үлгүлөр суюк азот менен тритурацияланган, андан кийин ДНК экстракциясы жогоруда айтылгандай жүргүзүлгөн (таза грибоктук культуралардын мицелийи үчүн).
Таблица 1. Колдонулган козу карындардын штаммдарынын келип чыгышы
Козу карындын аталышы | Өсүмдүк, орган | Тандалган жер |
---|---|---|
Colletotrichum коккоддору 1, C. коккоддор 2, C. коккоддор 3, Ilyonectria crassa, Rhizoctonia solani | картошка тубу | Кострома областы, 1-талаа муунунун картошка түйнөгү, Red Scarlett сорту |
Colletotrichum коккоддору 4 | картошка жалбырагы | Rep. Марий Эл, Йошкар-Ола |
Helminthosporium solani | картошка тубу | Магадан обл., Пос. Чатыр, картошканын тубу |
Cladosporium fulvum | помидор жалбырагы | Москва областы, ири жемиштүү помидор |
Alternaria tomatophila | помидор жемиши | Бүткүл россиялык өсүмдүктөрдү коргоо илим-изилдөө институтунун микология жана фитопатология лабораториясынын кызматкерлери тарабынан сунушталган |
Fusarium verticillium, Phomopsisphaseoli, Alternaria alternata, Phellinus ferrugineovelutinus, Stemphylium vesicarium, Cladosporium cladosporioides, Acrodontium luzulae, Penicillium sp. | помидор жемиши | Краснодар аймагы, Крымский району, каймак |
Fusarium oxysporum | буудайдын тамыры | Moscow обл. |
ПТР DTprime күчөткүчүндө (DNA-Technology) жүргүзүлдү. ПТР үчүн, баштапкы праймерлер жана глицерин трифосфатдегидрогеназа генинин түрлөрүнө тиешелүү зонасы колдонулган: Coc70gdf –TCATGATATCATTTCTCTCACGGCA, тескери праймер Coc280gdr - TACTTGAGCATGTAGGCCTGGGT1. Праймерлер 213 б.к. аймакты күчөтөт.
Реакция 50 нг жалпы ДНКны (жалбырактарды жана түйнүктөрдү анализдегенде) жана 10 нгди (таза грибоктук өсүмдүктөрдөн ДНКны анализдегенде) алды. Реакция аралашмасы (35 мкл) парафин катмары менен эки бөлүккө бөлүнгөн: төмөнкү (20 мкл) 2 мкл 10 × реакция буферин камтыган (750 мМ Tris-HCl, pH 8.8; 200 mM (NH4) 2SO4; 25 mM MgCl2; 0.1% Tween- 20), 0.5 мМ ар бир дезоксинуклеотид трифосфаты, ар бир праймерден 7 пмоль жана гидролизденүүчү флуоресценттик зонддун 4 пмоль; үстүңкү бөлүгүндө 1 мкл 10 × ПТР буфери жана 1 U Так полимеразы бар.
Аралашманы парафин менен бөлүп алуу түтүктөрдү 5 ° C температурада узак убакытка сактоого жана аларды 10 ° Cдан жогору температурада 80 мүнөт ысыткандан кийин ПТО үчүн ысык баштоону камсыз кылууга мүмкүндүк берет. ПТР төмөнкү программага ылайык жүргүзүлдү: 94.0 ° C - 90 с (1 цикл); 94.0 ° C - 30 с; 64.0 ° C - 15 с (5 цикл); 94.0 ° C - 10 с; 64.0 ° C - 15 с (45 цикл); 10.0 ° C - сактоо.
Жыйынтыктары жана талкуулоо
Глицерин трифосфатдегидрогеназ гендеринин ырааттуулугу Россиянын ар кайсы аймактарында жалбырактардан, сабактардан, картошка түйнүктөрүнөн жана помидор жемиштеринен (Кутузова, 45) бөлүнүп алынган 2018 штаммда аныкталды. Бардык штаммдардын изилденген ырааттуулугу эки нуклеотидден айырмаланган 2 топко бөлүнгөн. Эки топтун өкүлдөрүнүн нуклеотид катарлары KY496634 жана KY496635 сандары астында GenBankка сакталат.
BLAST программасынын жардамы менен кок70gdf, coc280gdr жана алардын негизинде иштелип чыккан cocgdz зонду текшерилди (www.ncbi.nlm.nih.gov/blast) Colletotrichum тукумунун түрлөрүнүн жана GenBank маалымат базасында жайгашкан башка организмдердин глицерин трифосфатдегидрогеназа генинин бардык ырааттуулуктарында.
Башка организмдердин ДНКнын праймер жана зонд үчүн өтө гомологдуу аймактары табылган жок.
Сыноо тутумунун сезгичтиги ар кандай концентрациядагы С коккод ДНКсы, антракноз менен жуккан картошка жалбырагынын ДНКсы (2017-жылы Мари Элинде чогултулган, Кызыл Скарлетт сорту) жана кара тактан жабыркаган түйнектердүн кабыгы (Кострома облусунда чогултулган) менен текшерилген. ар кандай Red Scarlett, 2-таблица). Түйнөктөрдө жана картошканын жалбырактарында ДНКнын бар экендигин тастыктоо үчүн, алардан таза культураларга C. коккод штамдары бөлүнүп алынган.
Сыноо тутумунун сезгичтигин талдоонун натыйжалары, анын ПКО аралашмасындагы жалпы курамы 0.05 нгдан жогору болгондо, анын үлгүсүндө C. коккод ДНКсынын болушун ийгиликтүү диагноздоо үчүн колдонсо болорун көрсөттү. Бул аныктоо үчүн жетиштүү, анткени бир склеротияда орто эсеп менен 0.131 нг, ал эми бир спорада болжол менен 0.04 нг ДНК бар (Cullen et al., 2002). Англис тобу тарабынан иштелип чыккан тест системасы (Cullen et al., 2002) ушундай сезгичтикти көрсөттү (34 нг ДНКда босого цикл 0.05 жана 37 нгда 0.005).
C. коккоддорду камтыган табигый үлгүлөрдү талдоо бардык учурларда анын үлгүдө бар экендигин ишенимдүү ачып берүүгө мүмкүндүк берди (2-таблица). ДНК изоляциясы боюнча сунушталган ыкма табигый өсүмдүктөрдүн үлгүлөрүн анализдөө үчүн колдонулган.
2-таблица. Чыныгы убакыт режиминдеги ПТО үчүн Colletotrichum коккоддорун идентификациялоо үчүн сунушталган сыноо тутумунун сезгичтигин аныктоо
Образец | Үлгүдөгү ДНК көлөмү *, нг | Босого цикли | C. коккоддорду аныктоо |
---|---|---|---|
Mycelium Colletotrichum коккоддору | 50 | 21.3 | + |
5 | 25.7 | + | |
0.5 | 29,7 | + | |
0.05 | 33.5 | + | |
0.005 | 40 | - | |
0.0005 | 42.8 | - | |
0.00005 | - | ||
Булчуң кабыгы 1 | 50 | 32 | + |
Булчуң кабыгы 2 | 50 | 30 | + |
Булчуң кабыгы 3 | 50 | 31.5 | + |
Картошканын жалбырагы | 50 | 29.5 | + |
Эскертүү. * ПТР азыктарынын аралашмасында.
Сыноо тутумунун өзгөчөлүгү козу карындардын 15 түрүнөн алынган ДНК үлгүлөрүндө текшерилген. Козу карындардын бардык түрлөрү авторлор тарабынан жабыркаган жана ден-соолукка пайдалуу мөмөлөрдөн жана помидор, картошка түйнүктөрүнүн жалбырактарынан бөлүнүп алынган; буудайдын тамырынан бир штам бөлүнүп алынган (1-таблица). Мөмө-жемиштин бетинен бөлүнгөндөрдүн арасында помидор үчүн патогендүү болбогон түрлөрү дагы бар (мисалы, Феллинус ферругинеовелутин).
Изилдөөлөр көрсөткөндөй, C. коккод ДНКсы 20-27 босоголук циклде аныкталган, ал эми башка грибоктук түрлөр табылган эмес же 40-циклден кийин белги берген, бул спецификалык эмес ызы-чуу эффектине байланыштуу болушу мүмкүн (3-таблица).
Таблица 3. Козу карындардын ар кандай түрлөрүн текшерүү тутумун текшерүү
Козу карындын аталышы | Босого цикли |
Colletotrichum коккоддору 1 | 20.9 |
C. коккоддор 2 | 22.6 |
C. коккоддор 3 | 23 |
C. коккоддор 4 | 22 |
Fusarium oxysporum | > 40 |
F. verticalillium | > 40 |
Rhizoctonia solani | > 40 |
Phomopsis Phaseoli | > 40 |
Alternaria alternata | > 40 |
A. tomatophila | > 40 |
Helminthosporium solani | > 40 |
Phellinus ferrugineovelutinus | > 40 |
Stemphylium vesicarium | > 40 |
Ilyonectria crassa | > 40 |
Кладоспориум кладоспориоиддери | > 40 |
C. fulvum | > 40 |
Acrodontium luzulae | > 40 |
Penicillium сп. | > 40 |
Эскертүү. * Бардык үлгүлөрдөгү ДНКнын көлөмү 10 нг болгон.
Иштелип чыккан тест тутуму помидор жалбырагынын үлгүлөрүндөгү C. коккоддорун некротрофиялык козгогучтардын белгилери менен жана картошканын үрөндөрүнүн көрүнөө симптомдору жок экендигин аныктоо үчүн колдонулган. Изилдөө үчүн биз Кострома, Москва, Калуга, Нижний Новгород аймактарында өстүрүлгөн ар кандай сорттогу үрөндөрдүн тубун алдык. Үлгүлөрдө C. коккод ДНКсынын болушу маанилүү деп эсептелген, анализинде босогонун цикли 35тен ашкан эмес. Бул босого мааниси 0.05 нг С коккод ДНнын ишенимдүү аныкталышынын негизинде тандалган (босого цикл 33.5, 2-таблица) жана 40тан жогору чектик циклдарда, кээ бир башка козу карындардын түрлөрүнүн спецификалык эмес ДНКсы диагнозу коюлган. Мындай ыкма менен, C. coccodes ДНКнын олуттуу катышуусу Кострома, Москва, Калуга аймактарында жана Краснодар аймагынын Йейск аймагынан бир помидор жалбырагында өстүрүлгөн түйнектердүн 5 үлгүсүндө аныкталды (4, 5-таблицалар).
Кесте 4. Colletotrichum коккоддорун картошка түйнүгүнөн табуу *
Үлгүнүн номери | Картошка сорту | Өсүп жаткан жер | C. коккоддорду аныктоо | Босого цикли |
---|---|---|---|---|
1 | Red Scarlet | Кострома обл. | + | 35 |
2 | + | 35 | ||
3 | - | 38 | ||
4 | Sante | Moscow обл. | + | 34 |
5 | - | |||
6 | - | 41 | ||
7 | - | 41.8 | ||
8 | + | 30 | ||
9 | Жуковский эрте | Moscow обл. | - | 40.5 |
10 | - | 40.6 | ||
11 | - | |||
12 | Molly | Калуга обл. | + | 34.3 |
13 | - | 38.4 | ||
14 | Фантастика | Калуга обл. | - | |
15 | гала- | Нижний Новгород областы. | - | |
16 | - |
Эскертүү. * Бардык үлгүлөрдөгү ДНКнын көлөмү 50 нг болгон.
5-таблица. Помидор жалбырактарынан Colletotrichum коккоддорун аныктоо *
Үлгүнүн номери | Өсүп жаткан жер | C. коккоддорду аныктоо | Босого цикли |
---|---|---|---|
1 | Краснодар аймагы, Крым району | - | |
2 | - | ||
3 | - | ||
4 | - | 45 | |
5 | - | ||
6 | - | ||
7 | - | ||
8 | - | ||
9 | Краснодар аймагы, Йейск району | - | 39.2 |
10 | - | 40.8 | |
11 | - | ||
12 | - | 41.6 | |
13 | - | 40 | |
14 | - | 41 | |
15 | - | 41.9 | |
16 | - | ||
17 | - | ||
18 | - | 40.3 | |
19 | - | ||
20 | - | ||
21 | + | 34.5 | |
22 | - | ||
23 | - |
* Бардык үлгүлөрдөгү ДНКнын көлөмү 50 нг болгон.
Биз жараткан тест тутуму британиялык изилдөөчүлөр (Cullen et al., 2002) тарабынан иштелип чыккандан кем калбайт жана өсүмдүктөрдүн үлгүлөрүн талдоо үчүн ылайыктуу. Анын үрөн тубун анализдөө үчүн колдонулушу, түйнүктөгү C. коккоддук ДНКны сырткы зыян белгилери жок аныктоого жана жалбырактардын жугушун ийгиликтүү талдоого мүмкүнчүлүк берди.
Бүгүнкү күнгө чейин Россияда C. коккоддорунун жабыркашы үчүн картошка түйнөгүнө анализ жүргүзүлгөн эмес. Биздин биринчи изилдөөбүз Россия Федерациясынын ар кайсы аймактарында өстүрүлгөн 16 сыналган үрөндүн түйнөгүнүн ичинен 5синде C. коккоддору бар экендигин көрсөттү. Бул картошка түйнүгүнүн кара тактары Россияда кеңири таралган картошка оорусу экендигин жана анын картошка өсүмдүгүнүн көлөмүн жана сапатын төмөндөтүүдөгү ролу бааланбай калгандыгын көрсөтөт.
Помидор жалбырактарынын анализинин натыйжасында Краснодар аймагынын Йейск районунан бир жалбыракта C. коккод ДНКсынын бар экендиги аныкталды. Буга чейин, Россиянын түштүгүндөгү помидор талааларын британиялык тест тутумун (Cullen et al., 2002) колдонуп текшергенде, C. coccodes камтыган жалбырактар аныкталган, ал эми айрым талааларда C. coccodes жуккан жалбырактардын көп бөлүгү табылган (Белов жана башкалар.) 2018). Москва облусунун Краснодар жана Приморский аймактарында биз помидор жемиштерин таптык, андан C. коккоддордун таза культураларын бөлүп алдык. Бүгүнкү күндө Россияда помидордо C. коккоддору кеңири жайылышы мүмкүн жана анын зыяндуулугу дагы бааланбайт.
Ошентип, бүгүнкү күндө картошка менен помидорго C. коккоддорунун кеңири таралышы боюнча жетиштүү маалымат топтолду.
Бул козу карындын картошка жана помидор ооруларынын өнүгүшүндөгү ролун жакшыраак түшүнүү үчүн, анын Россияда кеңири жайылышын көзөмөлдөө, топурактын жана уруктун инфекциясынын ролун, сактоо учурунда жоготуулардагы кара тактын ролун изилдөө керек. ПТР диагностикасын колдонуу бул ишти бир кыйла жеңилдетиши мүмкүн, жана эки тест системасын бир учурда колдонуу анализдин тактыгын кыйла жогорулатат.
Бул иш Россиянын Илимий Фондунун 18-76-00009 гранты менен колдоого алынган.
Макала "Микология жана Фитопатология" журналына жарыяланган (54-том, No1, 2020).